Intracellular ROS Assay

细胞内活性氧检测

DCFH-DA 荧光探针法 + 流式定量双模式,评估细胞内氧化应激水平,输出可发表的定位与定量数据

ROS 检测
DCFH-DA 探针
氧化应激
成像 / 流式双模式

活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)是细胞有氧代谢过程中产生的一类高活性含氧分子与自由基,主要包括超氧阴离子(O₂·⁻)、过氧化氢(H₂O₂)、羟自由基(·OH)及单线态氧等。生理水平下 ROS 参与细胞信号转导与免疫防御;当生成与清除失衡即形成氧化应激,导致 DNA 损伤、脂质过氧化与蛋白质氧化,与肿瘤、动脉粥样硬化、神经退行性疾病、糖尿病及缺血再灌注损伤等密切相关。

常用 ROS 检测手段包括荧光探针法、电子顺磁共振(EPR/ESR)、化学发光法、分光光度法、电化学生物传感器与基因编码荧光蛋白探针等。其中 DCFH-DA 荧光探针法因操作简便、可实时成像、可流式定量,是应用最广泛的方案。

丰晖生物提供一站式细胞内 ROS 检测服务,支持荧光显微镜 / 激光共聚焦成像与流式细胞术两种读出模式,原始图像与完整报告同步交付。

提示:DCFH-DA 反映的是细胞内总体氧化水平,不区分具体 ROS 种类。若需区分特定活性氧,可联用 MitoSOX Red(线粒体超氧阴离子)、Amplex Red(H₂O₂)、DAF-FM DA(NO) 等特异性探针,我们可提供配套方案设计与检测。

DCFH-DA(2′,7′-二氯二氢荧光素二乙酸酯,2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetate)本身不具荧光,可自由穿过细胞膜。进入细胞后,被胞内酯酶水解为极性的 DCFH(2′,7′-二氯二氢荧光素);DCFH 无法自由穿膜,因而滞留在细胞内。

当细胞内存在 ROS 时,无荧光的 DCFH 被氧化为具有强绿色荧光的 DCF,其荧光强度与细胞内 ROS 水平正相关。因此可通过荧光显微镜、激光共聚焦或流式细胞仪检测绿色荧光信号,实现 ROS 水平的定性定位与定量分析。

DCF 的常用激发 / 发射波长为 488 nm / 525 nm(与 FITC 通道一致),可使用标准 FITC 滤光片或流式 FL1 通道检测。

图1 DCFH-DA 检测细胞内活性氧原理示意图

常用探针与适用场景

  • DCFH-DA — 反映细胞内总体氧化水平,性价比高,应用最广
  • MitoSOX Red — 特异性检测线粒体基质中的超氧阴离子,红色通道,可用于定位线粒体来源的 ROS
  • Amplex Red — 与辣根过氧化物酶联用,特异性定量 H₂O₂
  • DAF-FM DA — 检测一氧化氮(NO)水平
  • CellROX 系列 — 氧化后与 DNA 结合发出强荧光,适合流式与成像,背景更低

为什么同一批实验必须设探针空白对照?

DCFH-DA 在光照、空气暴露或长时间放置条件下会自发氧化产生背景荧光。设置不加探针的细胞空白对照与加探针但不处理的对照,可判断信号是否来自细胞内 ROS,而非探针自发氧化或仪器背景。这是 ROS 实验数据可信的前提。

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多种探针方案可选

依据研究目的匹配 DCFH-DA、MitoSOX Red、Amplex Red、DAF-FM DA 等探针,减少非特异性氧化干扰

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成像 + 流式双模式

同步实现 ROS 荧光的定位可视化与细胞群体 ROS 水平定量,数据形式更完整

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标准化流程与质控

严格 SOP 操作,配套阳性 / 阴性对照与探针空白对照,实验重复性好

📊

数据可直接发表

交付原始图像、定量数据与统计图表,格式满足论文投稿要求

🧪

全流程省心

只需提供细胞样本与处理信息,孵育、洗涤、上机与数据分析由我方完成

1

细胞处理

按方案给药、刺激或诱导氧化应激,同步设置对照组(含抗氧化剂干预组、阳性对照组)

2

探针孵育

以无血清培养基配制 DCFH-DA 工作液,37 ℃ 避光孵育,常用 20–30 min

3

充分洗涤

用无血清培养基或 PBS 洗涤 2–3 次,去除胞外游离探针,显著降低背景荧光

4

信号检测

荧光显微镜 / 共聚焦成像(488 nm 激发)或流式上机定量(FITC 通道平均荧光强度)

5

数据分析与报告

图像平均荧光强度或流式 MFI 定量,完成组间比较与统计学检验,出具完整报告

下表为本项服务的常规工作环节与说明。样品状态、数量与实验方案确认后,我们会给出明确的时间安排。

服务内容工作说明
样本接收与细胞处理含对照组与阳性对照方案确认
探针孵育与洗涤工作液现配现用,全程避光
上机检测(成像 / 流式)两种模式可任选,也可同批样本并行
数据分析与报告出具图像定量或流式 MFI 统计与图表输出
交付内容说明
原始荧光图像显微镜 / 共聚焦原始图(未裁剪、含拍摄参数),可供自行定量复分析
原始流式数据(FCS)逐样本原始事件数据,可导入 FlowJo 等软件重新设门分析
定量数据与统计图表平均荧光强度(MFI)或图像平均光密度,含组间比较与统计学检验结果
完整实验报告实验步骤、探针与试剂信息(厂家 / 货号 / 批号)、仪器与参数设置

以下为细胞内活性氧检测的两种典型读出结果。

结果呈现说明:荧光图像以绿色荧光强度反映细胞内 ROS 相对水平,处理组较对照组荧光增强;流式结果以 FITC 通道平均荧光强度(MFI)定量,可通过直方图位移直观展示组间差异。

1
仅适用于活细胞检测 — 检测前应避免固定、冷冻、剧烈离心等应激操作。这些处理本身就会改变细胞氧化状态,导致结果失真。
2
探针现配现用 — DCFH-DA 易被氧化,工作液需现配现用并全程避光,孵育期间避免长时间光照与空气暴露。
3
推荐无血清孵育体系 — 使用无血清培养基稀释探针,孵育后充分洗涤游离探针,可显著降低背景荧光。
4
统一细胞状态 — 各组细胞密度、活率与培养条件保持一致,避免死细胞与碎片带来非特异性信号。
5
必须设置对照 — 每批实验需设探针空白对照(不加探针)与阳性对照(如 H₂O₂ 或 Rosup 处理),验证检测体系有效。
6
慎用含抗氧化剂的体系 — 处理体系中若含 NAC、维生素 C、谷胱甘肽等抗氧化剂,会直接干扰检测结果,需在方案设计阶段说明。
7
明确结果解读边界 — DCFH-DA 反映总体氧化水平,无法区分具体 ROS 种类。若需明确 ROS 来源,建议联用特异性探针或补充 EPR 检测。

送样要求:成像模式建议 ≥1×10⁵ 个细胞/样本(贴壁细胞可铺于共聚焦小皿或爬片);流式模式建议 ≥5×10⁵ 个细胞/样本。请使用无血清培养基或预冷 PBS 重悬,避免使用含酚红的培养基,并附处理条件与分组信息。

Q每个样本需要多少细胞?

成像模式建议 ≥1×10⁵ 个细胞/样本(贴壁细胞可直接铺于共聚焦小皿或爬片);流式模式建议 ≥5×10⁵ 个细胞/样本。样本量不足时可提前沟通调整方案。

Q可以同时做成像和流式吗?

可以。同一批样本可先成像、后消化收集做流式,也可分组平行进行。我们会在方案确认阶段与您商定分组与细胞量分配。

QDCFH-DA 能区分是哪种活性氧吗?

不能。DCFH-DA 检测的是细胞内总体氧化水平。若需区分线粒体超氧阴离子、H₂O₂、NO 等特定种类,建议联用 MitoSOX Red、Amplex Red、DAF-FM DA 等特异性探针。

Q为什么对照组背景荧光很高?

常见原因包括:探针工作液放置过久已部分氧化、孵育后洗涤不充分、细胞状态差或死细胞比例高、培养基中含酚红或血清残留。我们会通过探针新鲜配制、充分洗涤与设置探针空白对照来规避。

Q检测周期多长?

具体周期需根据样本数量、检测模式(成像 / 流式)与排期评估确认,方案确认时我们会给出明确的时间安排。

Q原代细胞、组织样本可以检测吗?

可以。原代细胞、组织来源细胞均可检测,需提供新鲜的细胞悬液或组织样本。具体处理与运输方式请提前与我们确认。

需要细胞内活性氧检测服务?

告知细胞类型与处理方案,我们评估探针浓度与孵育条件,交付荧光图像、定量结果与阴阳性对照数据

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